申请/专利权人：苏州大学附属儿童医院

申请日：2017-08-09

公开（公告）日：2020-04-21

公开（公告）号：CN107383195B

主分类号：C07K16/28(20060101)

分类号：C07K16/28(20060101);C12N5/20(20060101);G01N33/68(20060101);G01N33/577(20060101)

优先权：

专利状态码：有效-授权

法律状态：2020.04.21#授权;2017.12.19#实质审查的生效;2017.11.24#公开

摘要：本发明公开了抗人DLL4单克隆抗体6F12的制备方法，由杂交瘤细胞株分泌得到，杂交瘤细胞株保藏信息为：保藏单位：中国普通微生物菌种保藏管理中心CGMCC，保藏地址：北京市朝阳区北辰西路1号院3号；保藏时间：2017年6月7日；保藏号：CGMCCNo.14284；分类命名：分泌抗人DLL4分子单克隆抗体杂交瘤细胞株6F12。本发明的单克隆抗体6F12与DC的结合与商品化的克隆MHD4‑46相比并不会阻断DLL4+DC诱导NaïveTcells向Th1方向分化的能力。

主权项：1.抗人DLL4单克隆抗体6F12的制备方法，其特征在于，所述抗人DLL4单克隆抗体6F12由杂交瘤细胞株制备；所述杂交瘤细胞株保藏于中国普通微生物菌种保藏管理中心，保藏地址为北京市朝阳区北辰西路1号院3号，保藏号为CGMCCNo.14284。

全文数据：抗人DLL4单克隆抗体6F12的制备方法技术领域[0001]本发明涉及一种单克隆抗体，具体涉及抗人DLL4单克隆抗体6F12的制备方法。背景技术[0002]Notch信号通路是进化上高度保守的一套信号系统，在细胞增殖、分化和凋亡，以及细胞生长和各种生理功能中均发挥重要作用。Notch信号分子在绝大多数的多细胞生物体内表达。哺乳动物主要表达四种Notch受体分别为:Notchl、2、3、4和五种Notch配体分别为：DLLl、DLL3、DLL4、Jagged1和Jagged2。[0003]早期研究显示，DLL4在血管内皮细胞内高度选择性表达，对于调控内皮细胞发育至关重要。2004年Amsen及其同事发现通过LPS刺激包含有抗原递呈细胞的骨髓细胞可以诱导DLL4的表达。2007年，Skokos及其同事报道，CD8-DC通过DLL4分子激活Notch信号通路的方式可以诱导细胞向Thl方向分化，而这种方式是非IL-12依赖性的。随后有研究表明，在实验小鼠模型中，DLL4可以调控许多疾病的发病，例如炎症性疾病、呼吸道病毒感染、实验性过敏性结肠炎、实验性自身免疫性脑脊髓炎以及分支杆菌引起的肺肉芽肿。ZhangYi教授的研究证实了表达DLL4的小鼠树突状细胞dendriticcell，DCs可以提高自身反应性T细胞的应答并介导移植物抗宿主反应。但是对人DLL4+DCs的研究还有待进一步开展。[0004]最近，ZhangYi教授等人的研究报道了人DLL4+DCs在调节T细胞向Thl和Thl7分化中的关键作用。来自于健康人的外周血中的CDlC+DCs和浆细胞样DCpDC表面不表达DLL4分子。相比之下，进行同种异体造血干细胞移植的患者外周血中的DLL4+⑶IC+DCs表达的DLL4mRNA水平比健康人高16倍。在激活TLR信号后，来自于健康人的⑶IC+DCs表达的DLL4水平显著上调。相比之下pDCs上调的程度较低。活化后的DLL4+DCs比未刺激的DCs能够更好地促进Thl和Thl7分化。在DLL4+DCs刺激活化T细胞的过程中，使用DLL4的中和抗体来阻断Notch信号，可以减少Thl和Thl7细胞的产生。因此对于人外周血循环的DCs来说，DLL4是其诱导T细胞向Thl和Thl7分化的一个重要功能性分子。这些发现为人类炎症性疾病的治疗和干预提供了可能的途径。[0005]DLL4分子自被发现以来一直被广大科研工作者所关注，针对人DLL4分子也展开了许多方面的功能性研究。在许多功能性研究中，需要通过抗体标记后使用流式细胞仪将DLL4+的目的细胞分选出来。但目前使用的商品化抗人DLL4单克隆抗体还存在一定的局限性。目前许多知名抗体公司用于流式检测的抗人DLL4荧光抗体仅有一个克隆号MHD4-46，而该克隆号的抗体在ZhangYi教授发表的文献中明确报道了其具有阻断DLL4信号的功能。目前并没有一株商品化的单克隆抗体可用于标记并通过流式细胞仪分选出DLL4+DCs的同时保留DLL4的信号功能。因此，研制抗人DLL4+功能性单克隆抗体将有助于更好的研究DLL4分子的生物学功能，为研究提供一种新的手段。发明内容[0006]本发明的发明目的是提供一种抗人DLL4单克隆抗体6F12的制备方法，由抗人DLL4单克隆抗体的杂交瘤细胞株产生。[0007]为达到上述发明目的，本发明采用的技术方案是：抗人DLL4单克隆抗体6F12的制备方法，所述抗人DLL4单克隆抗体6F12由杂交瘤细胞株制备。[0008]上述技术方案中，所述杂交瘤细胞株保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，保藏地址为北京市朝阳区北辰西路1号院3号，保藏号为CGMCCNo.14284。[0009]上述技术方案中，在杂交瘤培养液中接种杂交瘤细胞株，培养后将培养液分离纯化制备单克隆抗体。[0010]上述技术方案中，在动物腹腔内接种杂交瘤细胞株，将动物腹水液分离、纯化制备单克隆抗体。[0011]本发明还公开了一种检测DLL4蛋白的表达水平的试剂或者分选DLL4+DC的试剂的制备方法，在杂交瘤培养液中接种杂交瘤细胞株，培养后将培养液分离纯化制备单克隆抗体;将所述单克隆抗体与分散介质混合制备得到检测DLL4蛋白的表达水平的试剂或者分选DLL4+DC的试剂。[0012]上述技术方案中，所述分散介质包括缓冲液。[0013]上述技术方案中，所述杂交瘤细胞株保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，保藏地址为北京市朝阳区北辰西路1号院3号，保藏号为CGMCCNo.14284。[00M]本发明还公开了一种检测DLL4蛋白的表达水平的试剂或者分选DLL4+DC的试剂的制备方法，在动物腹腔内接种杂交瘤细胞株，将动物腹水液分离、纯化制备单克隆抗体;将所述单克隆抗体与分散介质混合制备得到检测DLL4蛋白的表达水平的试剂或者分选DLL4+DC的试剂。[0015]上述技术方案中，所述分散介质包括缓冲液。[0016]上述技术方案中，所述杂交瘤细胞株保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，保藏地址为北京市朝阳区北辰西路1号院3号，保藏号为CGMCCNo.14284。[0017]本发明公开的杂交瘤细胞株的制备方法包括以下步骤：1构建高表达人DLL4分子的转基因细胞:将人DLL4CDS全长序列克隆入真核表达载体;转染仓鼠卵巢母细胞CHO细胞，通过药物和流式细胞仪筛选获得高表达DLL4分子的转基因细胞CH0DLL4;用转基因细胞CH0DLL4免疫BALBC小鼠；2获取融合细胞生长克隆：从免疫合格小鼠无菌取出脾脏细胞作为抗原致敏的B细胞，按照常规方法，将B细胞与骨髓瘤细胞AG8株融合，然后利用常规的融合细胞HAT筛选方法进行筛选，进而获取融合细胞生长克隆；3应用WesternBlot和流式细胞仪等生化和免疫学技术筛选和鉴定后，挑选出具有高抗体分泌水平的杂交瘤细胞株，所述杂交瘤细胞株保藏在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，分类命名为分泌抗人DLL4分子单克隆抗体杂交瘤细胞株6F12。[0018]上述杂交瘤细胞株的保藏信息为，保藏单位：中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心CGMCC，保藏地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号;保藏时间：2017年6月7日；保藏号:CGMCCNo.14284;分类命名：分泌小鼠抗人DLL4分子单克隆抗体杂交瘤细胞株6F12〇[0019]上述技术方案中，步骤（1中高表达人DLL4分子的转基因细胞CH0DLL4具有较强的免疫原性，并且所表达的抗原分子的空间构型能以自然状态暴露于细胞膜表面，从而可更有效地激发机体的免疫反应。[0020]上述技术方案中，步骤1中，制备CH0DLL4细胞的方法可以按照本领域技术人员熟知的DNA操作技术（例如参见Sambrooketal·，MolecularCloning:ALaboratoryManual,ColdSpringHarbour，1989进行基因的分离、核苷酸片段的切割与连接、克隆和表达载体的构建及扩增、核苷酸序列的分析与鉴定、细胞的转化和培养。[0021]本发明公开的由上述杂交瘤细胞株制备的单克隆抗体，为抗人DLL4单克隆抗体，命名为单克隆抗体6F12。[0022]本发明还提供了所述单克隆抗体6F12的重链可变区氨基酸序列：SEQ.ID.N0:1;轻链可变区氨基酸序列：SEQ.ID.N0:2。本发明公开的检测DLL4蛋白的表达水平的试剂或者分选DLL4+DC的试剂，由上述单克隆抗体6F12与分散介质混合制备得到;所述分散介质包括缓冲液，可以检测DLL4蛋白的表达水平或者分选DLL4+DC。[0024]本发明与现有技术相比具有下列优点：本发明所制备的抗人DLL4单克隆抗体6F12可识别不同的DLL4分子抗原结合位点；其对细胞上DLL4蛋白具有高效价，高特异性和高识别能力，可用于科研WesternBlot检测DLL4蛋白的表达水平。并且通过体外实验发现，单克隆抗体6F12与DC的结合与商品化的克隆MHD4-46相比并不会阻断DLL4+DC诱导Nai!veTcells向Thl方向分化的能力;可用于流式细胞仪分选DLL4+DC，并且不会对下一步的DLL4+DC诱导Nai：veTcells向Thl方向分化的功能性实验造成影响。附图说明[0025]图1为实施例一中以流式细胞术分析商品化抗人DLL4抗体对转基因细胞CHODLL4上DLL4分子的识别结果图；图2为实施例一中6F12杂交瘤细胞株染色体的核型分析图放大1000倍）；图3为实施例一中以WesternBlot分析单克隆抗体6F12识别抗原的结果图；图4为实施例一中以流式细胞术分析单克隆抗体6F12对转基因细胞CH0DLL4上DLL4分子的识别结果图；图5为实施例一中以流式细胞术分析单克隆抗体6F12识别的抗原位点的竞争性抑制的结果图；图6为实施例二中以流式细胞术分析抗人DLL4单克隆抗体6F12对DLL4阳性的mDC诱导04+NativeTcell向Thl方向分化过程的作用。具体实施方式[0026]下面结合具体实施例来进一步阐述本发明。应理解，这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。此外应理解，在阅读了本发明讲授的内容之后，本领域技术人员可以对本发明作各种改动或修改，这些等价形式同样落于本申请所附权利要求书所限定的范围。[0027]实施例一抗人DLL4单克隆抗体的制备1、转基因细胞CH0DLL4的建立1人DLL4基因的克隆包含有人DLL4全长CDS片段的质粒由厦门大学韩家淮实验室惠赠。以设计的带有限制性酶切位点的引物表1进行PCR扩增，反应条件为94°C变性60s，55°C退火60s，72°C延伸2min，共35个循环后，再于72°C延伸5min，得到全长片段;PCR产物通过回收试剂盒进行纯化。[0028]表1扩增引物序列2人DLL4表达载体的构建分别用限制性内切酶BamHI和EcoRI对回收的PCR产物和表达载体pcDNA3.1进行切害J，反应后的PCR产物和表达载体通过琼脂糖凝胶电泳进行分离，将含有目的条带的凝胶切下，利用回收试剂盒进行回收。在T4连接酶的作用下将PCR产物与表达载体链接，并转化感受态菌ToplO。将转化后的细菌涂于含氨苄的平板上，培养过夜后挑取阳性菌落，煮菌并进行PCR鉴定，排除假阳性菌落后，保种并送测序。测序结果通过NCBI网站上Blast比对，选取序列一致无任何突变的克隆。利用质粒提取试剂盒将构建好的质粒进行提取，表达载体命名为pcDNA3.1DLL4。[0029]3稳定表达人DLL4的CHO转基因细胞的构建将表达载体pcDNA3.1DLL4用脂质体法转染预铺于6孔板中的CHO细胞，整个过程按试剂盒LipofectamineTM3000操作手册进行。转染过夜后更换含10%FBS的1640培养基至2ml孔，继续培养至48h后取部分细胞利用流式细胞术检测GFP阳性率。通过GFP阳性率来判断表达载体转染的效率。同时将部分细胞按适当比例稀释后，重新铺于6孔板中，使用含600mgLG418通过预筛选确定适宜的G418浓度）的选择性培养基，筛选培养;待具有抗性的转基因细胞生长至足够数量，利用商品化的抗人DLL4抗体标记，通过分选流式细胞仪将高表达人DLL4的转基因CHO细胞群体分选出来。分选获得的细胞通过亚克隆，挑选出单克隆细胞株。流式细胞仪检测挑选的单克隆细胞株上人DLL4的表达水平，挑选出阳性率和表达水平最高的克隆，参见图1。[0030]2、分泌特异性鼠抗人DLL4抗体的杂交瘤细胞株的制备使用如上得到的高表达人DLL4分子的转基因细胞CH0DLL4作为免疫原，三次免疫接种Balbc小鼠（107500ul只）（间隔3周）。末次免疫后第四天，取小鼠脾脏细胞与P3X63Ag8小鼠骨髓瘤细胞株进行细胞融合共10块96孔板）。以高表达人DLL4分子的CH0DLL4为阳性对照以及CHOmock为阴性对照，细胞按1:1的比例混合后，用间接免疫荧光法对杂交瘤培养物上清进行初步筛选。筛选出阳性阴性比例复合1:1特征的克隆。阳性克隆经复筛和亚克隆后获得稳定地分泌特异性鼠抗人DLL4抗体的杂交瘤细胞株6F12。[0031]上述杂交瘤细胞株的保藏信息为，保藏单位：中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心CGMCC，保藏地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号;保藏时间：2017年6月7日；保藏号:CGMCCNo.14284;分类命名：分泌小鼠抗人DLL4分子单克隆抗体杂交瘤细胞株6F12〇[0032]杂交瘤细胞经体外持续传代后，仍能稳定地分泌特异性抗体;对杂交瘤细胞株的染色体分析显示，参见图2，这两组杂交瘤细胞的染色体数目为80-110。[0033]3、抗人DLL4单克隆抗体的生产与特性鉴定1采用腹水体内诱生方法生产单克隆抗体取6-8周龄的雌性Balbc小鼠，腹腔内注入Pristane0.5ml只）。一周后腹腔内接种杂交瘤细胞（IX1〇6只），同时再次腹腔内注射Pristane与福氏不完全佐剂的等体积混合物0.2ml只）。5-10天后收获腹水，并离心取上清于-80°C保存。[0034]腹水液经去除纤维蛋白和盐析处理后，以蛋白G亲和柱层析法纯化。收集蛋白峰流出液，对磷酸盐缓冲液（PBS透析后用751紫外分光光度计测定抗体蛋白浓度为0.8〜I.SmgAil13SDS-PAGE结果表明，6F12分泌的鼠抗人DLL4抗体可识别人DLL4重组蛋白（参见图3。间接免疫荧光法分析结果表明，纯化的单克隆抗体的效价在1:10000以上参见图4。[0035]2Ig亚类鉴定采用试纸快速测定Argen公司法鉴定Ig亚类，结果显示6F12为小鼠IgG2b型抗体。[0036]⑶抗体识别抗原位点的竞争性抑制试验在LPS和R848刺激活化24h后的人PBMC中（IxlO6管悬液加入单克隆抗体6F121:500，每管2ug，4°C孵育30分钟。洗细胞后依次加入1^11、!11^-01?、001：、〇123、01^4荧光抗体，41€孵育30分钟。再次洗涤后用流式细胞仪分析，同时设阳性和阴性对照，结果见图5。[0037]实施例二单抗对DC的体外生物学效应本实施例描述本发明的抗人DLL4单克隆抗体对DLL4阳性的mDC诱导⑶4+NaiveTcell向Thl方向分化过程的作用新鲜人外周血通过Ficoll分离获得人PBMC。使用美天妮的商品化分选试剂盒CDlc+DendriticCellIsolationKit，按美天妮提供的实验方案从PBMC中分选CDlc+DC，获得的细胞通过流式细胞仪检测，纯度在90%以上。使用含10%FBS的RPMI-1640培养基进行培养，加入R848终浓度为lugml和LPS终浓度为100ngml对DC刺激24h。[0038]第2天采用另一份新鲜人外周血通过Ficoll分离获得人PBMC。使用StemCell的商品化分选试剂盒EasySepHumanCD4+TcellIsolationKit，按StemCell提供的实验方案从PBMC中分选⑶4+Tcell，获得的细胞通过流式细胞仪检测，纯度在95%以上。使用CFSE对分选获得的细胞进行标记。标记完成后按Tcell:DC为10:1的比例，铺于U型底96孔⑶4+Tcell为IxlO6孔进行混合培养。培养第4天进行补液。实验共设三组，分别为:对照组；加入6F122ug孔）；加入6F122ug孔）。[0039]培养7天后收集细胞，使用eBioscience的商品化固定和破膜剂，按eBioscience提供的实验方案对细胞先进行CD4的细胞膜染色，再进行IFNg细胞内染色。流式检测结果显示，与对照组相比，6F12抗体作用组的T细胞中CFSELow群体细胞内IFNg的表达水平和比例没有明显的改变参见图6，独立重复实验显示各组间不具有统计学差异。说明单克隆抗体6F12与DC的结合并不会阻断DLL4+DC诱导Nai：veTcells向Thl方向分化的能力。

权利要求：1.抗人DLL4单克隆抗体6F12的制备方法，其特征在于，所述抗人DLL4单克隆抗体6F12由杂交瘤细胞株制备。2.根据权利要求1所述抗人DLL4单克隆抗体6F12的制备方法，其特征在于，所述杂交瘤细胞株保藏于中国普通微生物菌种保藏管理中心，保藏地址为北京市朝阳区北辰西路1号院3号，保藏号为CGMCCNo.14284。3.根据权利要求1所述抗人DLL4单克隆抗体6F12的制备方法，其特征在于，在杂交瘤培养液中接种杂交瘤细胞株，培养后将培养液分离纯化制备单克隆抗体。4.根据权利要求1所述抗人DLL4单克隆抗体6F12的制备方法，其特征在于，在动物腹腔内接种杂交瘤细胞株，将动物腹水液分离、纯化制备单克隆抗体。5.—种检测DLL4蛋白的表达水平的试剂或者分选DLL4+DC的试剂的制备方法，其特征在于，在杂交瘤培养液中接种杂交瘤细胞株，培养后将培养液分离纯化制备单克隆抗体;将所述单克隆抗体与分散介质混合制备得到检测DLL4蛋白的表达水平的试剂或者分选DLL4+DC的试剂。6.根据权利要求5所述的制备方法，其特征在于，所述分散介质包括缓冲液。7.根据权利要求5所述的制备方法，其特征在于，所述杂交瘤细胞株保藏于中国普通微生物菌种保藏管理中心，保藏地址为北京市朝阳区北辰西路1号院3号，保藏号为CGMCCNo.14284。8.—种检测DLL4蛋白的表达水平的试剂或者分选DLL4+DC的试剂的制备方法，其特征在于，在动物腹腔内接种杂交瘤细胞株，将动物腹水液分离、纯化制备单克隆抗体;将所述单克隆抗体与分散介质混合制备得到检测DLL4蛋白的表达水平的试剂或者分选DLL4+DC的试剂。9.根据权利要求8所述的制备方法，其特征在于，所述分散介质包括缓冲液。10.根据权利要求8所述的制备方法，其特征在于，所述杂交瘤细胞株保藏于中国普通微生物菌种保藏管理中心，保藏地址为北京市朝阳区北辰西路1号院3号，保藏号为CGMCCNo.14284。

百度查询： 苏州大学附属儿童医院 抗人DLL4单克隆抗体6F12的制备方法

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