申请/专利权人：四川农业大学

申请日：2018-12-26

公开（公告）日：2022-06-17

公开（公告）号：CN109536463B

主分类号：C12N7/01

分类号：C12N7/01;C12N15/63;C12R1/93

优先权：

专利状态码：有效-授权

法律状态：2022.06.17#授权;2019.04.23#实质审查的生效;2019.03.29#公开

摘要：本发明提供了一种鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv‑ΔgE+ΔgI及其构建方法。本发明利用GS1783大肠杆菌菌株及pEPkan‑S质粒，在细菌人工染色体重组鸭瘟病毒拯救系统平台上经两次同源重组缺失鸭瘟病毒gE基因和gI基因，再经过细胞内自发同源重组方法缺失MiniF元件，首次完成了无外源碱基和MiniF元件残留的鸭瘟病毒双基因无痕缺失株的构建。本发明技术方案解决了缺失鸭瘟病毒基因时在缺失位点残留碱基的问题并缺失了MiniF元件，为准确探究鸭瘟病毒基因功能及减毒活疫苗的构建提供了充分的技术支持。

主权项：1.鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI，于2018年7月4日保藏于中国典型培养物保藏中心，保藏编号为CCTCCNO：V201841。

全文数据：鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI及其构建方法技术领域本发明属于基因工程技术领域，具体涉及一种鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI及其构建方法。背景技术细菌人工染色体bacterialartificialchromosome,BAC是一种新发展起来的DNA载体系统，它具有容量大、遗传特性稳定、易于操作等优点，在基因文库构建和基因功能分析等方面有广泛的应用。将完整病毒基因组DNA分子插入BAC载体，利用该载体编码的最小生育力因子复制子Minimalfertilityfactorreplicon，Mini-F获得分子克隆化病毒，并结合大肠杆菌中成熟的基因定位修饰技术，从而实现在原核系统中病毒基因的缺失及外源基因的插入。目前较为常用的大肠杆菌基因定位修饰技术主要包括RedET介导的同源重组技术、RecA蛋白介导的同源重组技术、CreloxP介导的同源重组技术以及Tn转座子介导的随机插入和突变技术。利用分子克隆化技术手段现已获得成熟的细菌人工染色体鸭瘟病毒拯救系统平台，同时利用大肠杆菌基因定位修饰RedET介导的同源重组技术可在细菌人工染色体鸭瘟病毒拯救系统平台上进行鸭瘟病毒基因的缺失和外源基因的插入，该成果极大的推动了鸭瘟病毒基因功能的研究进程。RedET介导的同源重组技术是基于λ-噬菌体Red操纵子RedαRedβRedγ和Rac噬菌体RecERecT同源重组酶的同源重组打靶技术。该技术操作简单、快速、高效，广泛应用于基因缺失、突变工作。但是利用该操作技术进行基因缺失、突变会在缺失或突变位点残留约80bp左右外源碱基序列FRT位点，该位点的残留将影响基因功能的准确分析。MiniF元件作为维持BAC载体复制的最小生育力因子复制子，主要由调控BAC复制起点oriS的repE、repF基因、调控复制子分配的sopA、sopB基因以及编码着丝粒区域的sopC基因构成。为完成细菌抗性筛选及BAC标记筛选，MiniF元件加入了抗性筛选基因和荧光标记基因。MiniF元件插入病毒基因组，增加基因组长度，对病毒复制产生不确定影响。同时MiniF元件作为细菌序列在病毒基因组上残留，不利于减毒活疫苗的开发和许可。因此解决碱基残留问题并去除MiniF元件获得无痕基因缺失株，已成为探究鸭瘟病毒基因缺失方法的重点。鸭瘟DuckPlague，DP是由α-疱疹病毒亚科中鸭瘟病毒DuckPlaguevirus,DPV引起的鸭、鹅等水禽的急性接触性高度致死性传染病。该病首先由荷兰报道，随即在我国华南、华中和华东等养鸭业较为发达的地区流行，给我国的养鸭业造成了严重的经济损失。因此深入了解鸭瘟病毒基因功能、加强对鸭瘟疫病的研究对确保我国养鸭业健康、可持续发展尤为重要。鸭瘟病毒DPV-CHv株基因组DNA全长162175bp，包含78个开放阅读框，可编码参与鸭瘟病毒生命周期的结构蛋白和非结构蛋白，其中结构蛋白主要包括衣壳蛋白、皮层蛋白和囊膜蛋白。囊膜蛋白为糖基化蛋白，包括gB、gC、gD、gE、gG、gH、gI、gJ、gK、gL、gM、gN十二种。糖蛋白具有介导病毒吸附、进入敏感细胞以及促进病毒在细胞间传播的功能，同时携带抗原决定簇，可诱导动物机体免疫系统对病毒的识别并造成组织的病理损伤，因此探究囊膜糖蛋白在鸭瘟病毒生命周期中的作用对深入探究鸭瘟病毒基因功能及开展鸭瘟疫病防治工作至关重要。现有技术中利用以BAC为平台分子克隆化病毒的技术，将鸭瘟病毒基因组重组到含有BAC的病毒转移载体中，构建细菌人工染色体重组鸭瘟病毒拯救系统平台DPVCHv-BAC-G。同时结合RedET修饰技术，在原核系统中通过成熟的基因操作手段完成鸭瘟病毒基因缺失和外源基因插入。但利用RedET修饰技术在细菌人工染色体重组鸭瘟病毒拯救系统平台上对鸭瘟病毒基因缺失后，会在缺失基因处残余两处FRT位点，同时残留MiniF元件。FRT外源位点和MiniF元件的残留对基因功能的探究、减毒活疫苗的开发和许可存在影响。发明内容针对现有技术中存在的上述问题，本发明提供一种鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI及其构建方法，该构建方法可有效解决缺失鸭瘟病毒基因时在缺失位点残留碱基，同时残留MiniF元件的问题。为实现上述目的，本发明解决其技术问题所采用的技术方案是：一种鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株，为马立克病毒属Mardivirus，命名为鸭瘟病毒gE和gI双缺失病毒株DPVCHv-ΔgE+ΔgI，于2018年7月4日保藏于中国典型培养物保藏中心地址为：湖北省武汉市武昌区武汉大学，保藏编号为CCTCCNO：V201841。上述鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI即鸭瘟病毒gE和gI双缺失病毒株DPVCHv-ΔgE+ΔgI的构建方法包括以下步骤：1将pBAC-DPV质粒转化到GS1783大肠杆菌感受态中，获得GS1783-pBAC-DPV菌株，然后制备GS1783-pBAC-DPV感受态；2以pEPkan-S为模板，以GS1783-BAC-ΔgE-F和GS1783-BAC-ΔgE-R作为引物，通过PCR方法扩增包含I_SceI酶切位点和Kana元件的碱基片段以及gE基因上游和下游各40bp同源臂的打靶片段I_SceI-Kana-gE，切胶回收获得I_SceI-Kana-gE片段；3将I_SceI-Kana-gE片段转化到GS1783-pBAC-DPV感受态中，筛选，获得阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-gE-Kana；4将阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-gE-Kana中的I_SceI-Kana片段去掉，制备GS1783-pBAC-DPV-ΔgE感受态；5以pEPkan-S为模板，以GS1783-BAC-ΔgI-F和GS1783-BAC-ΔgI-R作为引物，通过PCR方法扩增包含I_SceI酶切位点和Kana元件的碱基片段以及gI基因上游和下游各40bp同源臂的打靶片段I_SceI-Kana-gI，切胶回收获得I_SceI-Kana-gI片段；6将I_SceI-Kana-gI片段转化到GS1783-pBAC-DPV-ΔgE感受态中，经抗生素筛选和PCR鉴定，获得阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-ΔgE-gI-Kana；7将阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-ΔgE-gI-Kana中的I_SceI-Kana片段去掉，制备GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI感受态；8以pEPkan-S为模板，以GS1783-MiniF-F和GS1783-MiniF-R作为引物，通过PCR方法扩增包含I_SceI酶切位点和Kana元件的碱基片段、位于MiniF元件ori2基因下游240bp处和位于MiniF元件ori2基因下游290bp处的同源臂片段I_SceI-Kana-MiniF，切胶回收获得I_SceI-Kana-MiniF片段；9以CHv基因组为模板，以CHv-UL23-F和CHv-UL23-R作为引物，通过PCR方法扩增包含UL23基因、I_SceI-Kana-MiniF下游同源臂重叠25bp和位于MiniF元件ori2基因下游180bp处的同源臂片段，切胶回收获得UL23-MiniF片段；10以I_SceI-Kana-MiniF片段和UL23-MiniF片段为模板，进行PCR融合反应，然后以融合片段为模板，以GS1783-MiniF-F和CHv-UL23-R作为引物进行PCR扩增获得I_SceI-Kana-MiniF-UL23打靶片段；11将I_SceI-Kana-MiniF-UL23打靶片段转化到GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI感受态中，经抗生素筛选和PCR鉴定，获得阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI-UL23-Kana；12将阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI-UL23-Kana中的I_SceI-Kana片段去掉，获得阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI-UL23；13从阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI-UL23中提取pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI-UL23质粒，将pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI-UL23质粒转染DEF细胞，通过克隆筛选，获得gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI。进一步地，步骤2、步骤5、步骤8和步骤9中PCR扩增体系为：ddH2O22μl、MaxDNAPolymerase25μl、上游引物1μl、下游引物1μl、模板1μl；PCR扩增条件为：98℃预变性2min、98℃变性10s、55℃退火15s、72℃延伸5s，共30个循环，最后72℃延伸10min。进一步地，步骤2中引物序列为：GS1783-BAC-ΔgE-F:5’-ATACTGCCGGCCAGACTACGGAACCTCAACAATTGGTACGtagggataacagggtaatcgattt-3’；GS1783-BAC-ΔgE-R:5’-TAACTATTTCACTAGTGAGTCATTAGTTCAACATCCATGACGTACCAATTGTTGAGGTTCCGTAGTCTGGCCGGCAGTATgccagtgttacaaccaat-3’。进一步地，步骤5中引物序列为：GS1783-BAC-ΔgI-F:5’-GTGCGCCATATAGACGATATATTGAGTTTCAAAAATAGAAtagggataacagggtaatcgattt-3’；GS1783-BAC-ΔgI-R:5’-TCATAACAAAAACATTTACTTTTAGTCATACTGATGTGAATTCTATTTTTGAAACTCAATATATCGTCTATATGGCGCACgccagtgttacaaccaat-3’。进一步地，步骤8中引物序列为：GS1783-MiniF-F:5’-TTATTAATCTCAGGAGCCTGTGTAGCGTTTATAGGAAGTAGTGTTCTGTCATGATGCCTGCAAGCGGTAACGAAAACGATtgttacaaccaattaacc-3’；GS1783-MiniF-R:5’-ATCGTTTTCGTTACCGCTTGCAGGCATCATGACAGAACACTACTTCCTATtagggataacagggtaatcgat-3’。进一步地，步骤9中引物序列为：CHv-UL23-F:5’-GCCTGCAAGCGGTAACGAAAACGATtcaattaattgtcatctcgg-3’；CHv-UL23-R:5’-CCGCTCCACTTCAACGTAACACCGCACGAAGATTTCTATTGTTCCTGAAGGCATATTCAACGGACATATTAAAAATTGA-3’。进一步地，步骤10中引物序列为：GS1783-MiniF-F:5’-TTATTAATCTCAGGAGCCTGTGTAGCGTTTATAGGAAGTAGTGTTCTGTCATGATGCCTGCAAGCGGTAACGAAAACGATtgttacaaccaattaacc-3’；CHv-UL23-R:5’-CCGCTCCACTTCAACGTAACACCGCACGAAGATTTCTATTGTTCCTGAAGGCATATTCAACGGACATATTAAAAATTGA-3’。进一步地，步骤10中PCR融合体系为：ddH2O8μl、MaxDNAPolymerase10μl、模板I_SceI-Kana-MiniF片段和UL23-MiniF片段各1μl；PCR融合条件为：95℃预变性5min、95℃变性15s、55℃退火5s、72℃延伸1min，共5个循环。进一步地，步骤10中PCR扩增体系为：融合模板20μl、上游引物GS1783-MiniF-F0.5μl、下游引物CHv-UL23-R0.5μl；PCR扩增条件为：98℃预变性2min、98℃变性10s、55℃退火15s、72℃延伸5s，共30个循环，最后72℃延伸10min。本发明提供的鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI及其构建方法，具有以下有益效果：为获得无外源碱基和MiniF元件残留的鸭瘟病毒基因缺失株，本发明在细菌人工染色体重组鸭瘟病毒拯救系统平台的基础上，利用Red-based修饰技术，即利用含有可编码Red操纵子和I_SceI酶基因序列的GS1783大肠杆菌菌株及含有编码卡纳抗性及I_SceI酶切位点的质粒pEPkan-S，首先在细菌人工染色体重组鸭瘟病毒拯救系统平台上经两次同源重组缺失鸭瘟病毒gE基因和gI基因，再经细胞内自发同源重组方法缺失MiniF元件，首次完成了无外源碱基和MiniF元件残留的鸭瘟病毒双基因无痕缺失株的构建。本发明技术方案解决了缺失鸭瘟病毒基因时在缺失位点残留碱基的问题并缺失了MiniF元件，为准确探究鸭瘟病毒基因功能及减毒活疫苗的构建提供了充分的技术支持。附图说明图1为pEPkan-S质粒图谱。图2为利用Red-Based修饰技术在细菌人工染色体重组鸭瘟病毒拯救系统平台上进行基因缺失的操作流程图以gE基因缺失为例。图3为利用Red-Based修饰技术和细胞内自发同源重组技术对MiniF元件进行缺失的操作流程图。图4为DPVCHv-ΔgE+ΔgI无痕缺失病毒株病毒拯救后图片。图5为DPVCHv-ΔgE+ΔgI接种鸭子48h后肝脏DNA提取物的PCR检测。图6为DPVCHv-ΔgE+ΔgI接种鸭子后在不同时间点获取的血液、脾脏和肝脏中缺失病毒含量。具体实施方式鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株，命名为鸭瘟病毒gE和gI双缺失病毒株DPVCHv-ΔgE+ΔgI，构建过程所用材料及试剂如下：1、实验材料1细胞、菌株、病毒毒株、质粒原代鸭胚成纤维细胞由10-11日龄非免疫受精鸭胚按常规方法制备；GS1783菌株由四川农业大学实验室保存；pBAC-DPV质粒由四川农业大学实验室构建并保存；pEPkan-S质粒由四川农业大学实验室保存。2、分子生物学试剂质粒小提试剂盒购自TIANGEN公司；QIAGENPlasmidMidiKit购自QIAGEN公司；普通琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒购自TIANGEN公司；MaxDNAPolymerase购自Takara公司；TaKaRaMiniBESTViralRNADNAExtractionKitVer.5.0购自TaKaRa公司；Lipofectamine3000购自Invitrogen公司；即用型SABC免疫组化染色试剂盒兔IgG购自博士德公司；DAB显色试剂盒黄购自博士德公司。3、实验所用溶液及其配制LB液体培养基：称取Tryptone10g、YeastExtract5g、氯化钠10g溶于800mL去离子水中，充分搅拌，定容至lL，高温高压灭菌。LB固体培养基：在定容至1L的LB液体培养基中加入15g琼脂粉，高温高压灭菌后，冷却至60℃左右，加入1.5mL氯霉素储存浓度25mgml或1.5mL卡那霉素储存浓度50mgmL，铺制平板，待凝固后，4℃保存。MEM：将9.6gMEM干粉和2.2g碳酸氢钠溶于800mL去离子水，充分搅拌，调节pH值至7.4，定容至lL，过滤除菌，4℃保存。实施例1制备鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI，其构建方法包括以下步骤：1、制备GS1783电转感受态，电转化pBAC-DPV质粒1复苏带pBAC-DPV质粒的大肠杆菌于含有氯霉素的LB固体培养基中，37℃培养过夜；挑单菌落接种于含有氯霉素的LB液体培养基中，37℃培养过夜；2按照QIAGENPlasmidMidiKit操作说明提取pBAC-DPV质粒；3复苏GS1783冻存菌于LB固体培养基中，30℃培养过夜；4挑取GS1783单菌落接种于5mLLB液体培养基中，30℃培养过夜，获得种子液；5将5mL种子液加入100mLLB液体培养基中，30℃摇至OD600值在0.5～0.7之间；6将步骤5所得菌液立即放入冰水混合物中冷却20min；7取步骤6所得菌液，4℃、4500×g离心10min去上清；8用预冷超纯水在冰上反复清洗步骤7菌体沉淀；9向步骤8所得菌体中加入超纯水将菌液定容至500μl，每管100μl分装至预冷EP管，获得GS1783电转感受态；10在100μlGS1783电转感受态中加入20ngpBAC-DPV质粒，混匀后将感受态和质粒一起加入2mm预冷的电击杯底部，15kVcm条件下进行电击；11取100μlLB液体培养基重悬电击后菌体，30℃摇菌1h后，4500×g离心菌体2min，弃上清，采用200μlLB液体培养基悬浮沉淀，涂布在含有氯霉素的LB固体培养基上，30℃培养24h，获得GS1783-pBAC-DPV菌株。2、扩增I_SceI-Kana-gE打靶片段1复苏带有pEPkan-S质粒的大肠杆菌于含有卡那霉素的LB固体培养基中，37℃培养过夜；挑单菌落接种于含有卡那霉素的LB液体培养基中，37℃培养过夜，采用质粒小提试剂盒提取pEPkan-S质粒pEPkan-S质粒图谱见图1；2以pEPkan-S质粒为模板，GS1783-BAC-ΔgE-F和GS1783-BAC-ΔgE-R为引物，扩增I_SceI-Kana-gE打靶片段，采用普通琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒回收扩增片段；GS1783-BAC-ΔgE-F:5’-ATACTGCCGGCCAGACTACGGAACCTCAACAATTGGTACGtagggataacagggtaatcgattt-3’SEQIDNO：1GS1783-BAC-ΔgE-R:5’-TAACTATTTCACTAGTGAGTCATTAGTTCAACATCCATGACGTACCAATTGTTGAGGTTCCGTAGTCTGGCCGGCAGTATgccagtgttacaaccaat-3’SEQIDNO：2PCR扩增体系为：ddH2O22μl、MaxDNAPolymerase25μl、上游引物GS1783-BAC-ΔgE-F1μl、下游引物GS1783-BAC-ΔgE-R1μl、模板pEPkan-S质粒1μl；PCR扩增条件为：98℃预变性2min、98℃变性10s、55℃退火15s、72℃延伸5s，共30个循环，最后72℃延伸10min，于16℃保存。利用Red-Based修饰技术在细菌人工染色体重组鸭瘟病毒拯救系统平台上进行基因缺失的操作流程图以gE基因缺失为例见图2，具体过程包括如下的3和4两个过程。3、制备GS1783-pBAC-DPV电转感受态进行打靶片段打靶1复苏GS1783-pBAC-DPV冻存菌于含有氯霉素的LB固体培养基中，30℃培养过夜；2挑取GS1783-pBAC-DPV单菌落接种于5mL含氯霉素的LB液体培养基中，30℃培养过夜，获得种子液；3将5mL种子液加入100mL含氯霉素的LB液体培养基中，置于30℃摇至OD600值在0.5～0.7之间；4将步骤3所得菌液于42℃培养15min后立即放入冰水混合物中冷却20min；5取50mL步骤4所得菌液，于4℃4500×g离心10min，去上清；6用预冷超纯水在冰上反复清洗步骤5菌体沉淀；7向步骤6所得菌体中加入超纯水将菌液定容至500μl，每管100μl分装至预冷EP管，获得GS1783-pBAC-DPV电转感受态；8在100μl电转感受态中加入200ngI_SceI-Kana-gE打靶片段，混匀后将感受态和打靶片段一起加入2mm预冷的电击杯底部，15kVcm条件下进行电击；9取100μlLB液体培养基重悬电击后菌体，30℃摇菌1h后，于4500×g离心菌体2min，弃上清，200μlLB液体培养基悬浮沉淀，涂布于含有卡那霉素和氯霉素双抗生素抗性的LB固体培养基，于30℃培养48h；10PCR鉴定步骤9所得单菌落，获得阳性菌落GS178-pBAC-DPV-gE-Kana，以步骤9中生长的单菌落重悬液为模板，利用扩增I_SceI-Kana-gE打靶片段上游引物GS1783-BAC-ΔgE-F和鉴定gE基因下游引物gE-R鉴定阳性菌落，获得阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-gE-Kana；GS1783-BAC-ΔgE-F:5’-ATACTGCCGGCCAGACTACGGAACCTCAACAATTGGTACGtagggataacagggtaatcgattt-3’SEQIDNO：1gE-R：5’-AGCGAGTACTTCTCTGCGTC-3’SEQIDNO：3PCR扩增体系为：ddH2O22μl、MaxDNAPolymerase25μl、上游引物GS1783-BAC-ΔgE-F1μl、下游引物gE-R1μl、模板为步骤9单菌落重悬液1μl；PCR扩增条件为：98℃预变性2min、98℃变性10s、55℃退火15s、72℃延伸5s，共30个循环，最后72℃延伸10min，于16℃保存。4、去掉I_SceI-Kana片段1挑取GS1783-pBAC-DPV-gE-Kana单菌落接种于2mL含氯霉素的LB液体培养基中，30℃培养过夜，获得种子液；2取10μl步骤1所得种子液接种于2mL含氯霉素的LB液体培养基中，30℃培养2h至菌液呈现轻微云雾状；3向步骤2所得菌液中加入1mL含氯霉素的LB液体培养基和5M终浓度为2％的L-阿拉伯糖，30℃培养1h；4将步骤3所得菌液立即放入42℃水浴中培养30min；5将步骤4所得菌液置于30℃培养2h后，取1μl菌液加入200μlLB液体培养基中混匀后涂布到含有氯霉素的LB固体培养基，30℃培养24h～48h；6挑取步骤5中所得单菌落在含氯霉素和卡纳霉素双抗性LB固体培养基和氯霉素单抗性LB固体培养基上进行平行筛选，将氯霉素和卡纳霉素双抗性LB固体培养基不生长，氯霉素单抗性LB固体培养基生长的菌落通过PCR方法利用gE基因鉴定引物鉴定，获得阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-ΔgE。gE-F：5’-TCTCAAGACGCTCTGGAATC-3’SEQIDNO：4gE-R：5’-AGCGAGTACTTCTCTGCGTC-3’SEQIDNO：3PCR扩增体系为：ddH2O22μl、MaxDNAPolymerase25μl、上游引物gE-F1μl、下游引物gE-R1μl、模板为步骤6单菌落重悬液1μl；PCR扩增条件为：98℃预变性2min、98℃变性10s、55℃退火15s、72℃延伸5s，共30个循环，最后72℃延伸10min，于16℃保存。5、扩增I_SceI-Kana-gI打靶片段1复苏带有pEPkan-S质粒的大肠杆菌于含有卡那霉素的LB固体培养基中，37℃培养过夜；挑单菌落接种于含有卡那霉素的LB液体培养基中，37℃培养过夜，采用质粒小提试剂盒提取pEPkan-S质粒；2以pEPkan-S质粒为模板，GS1783-BAC-ΔgI-F和GS1783-BAC-ΔgI-R为引物，扩增I_SceI-Kana-gI打靶片段，采用普通琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒回收扩增片段；GS1783-BAC-ΔgI-F:5’-GTGCGCCATATAGACGATATATTGAGTTTCAAAAATAGAAtagggataacagggtaatcgattt-3’SEQIDNO：5GS1783-BAC-ΔgI-R:5’-TCATAACAAAAACATTTACTTTTAGTCATACTGATGTGAATTCTATTTTTGAAACTCAATATATCGTCTATATGGCGCACgccagtgttacaaccaat-3’SEQIDNO：6PCR扩增体系为：ddH2O22μl、MaxDNAPolymerase25μl、上游引物GS1783-BAC-ΔgI-F1μl、下游引物GS1783-BAC-ΔgI-R1μl、模板pEPkan-S质粒1μl；PCR扩增条件为：98℃预变性2min、98℃变性10s、55℃退火15s、72℃延伸5s，共30个循环，最后72℃延伸10min，于16℃保存。6、制备GS1783-pBAC-DPV-ΔgE电转感受态进行打靶片段打靶1复苏GS1783-pBAC-DPV-ΔgE冻存菌于含有氯霉素的LB固体培养基中，30℃培养过夜；2挑取GS1783-pBAC-DPV-ΔgE单菌落接种于5mL含氯霉素的LB液体培养基中，30℃培养过夜，获得种子液；3将5mL种子液加入100mL含氯霉素的LB液体培养基中，置于30℃摇至OD600值在0.5～0.7之间；4将步骤3所得菌液于42℃培养15min后立即放入冰水混合物中冷却20min；5取50mL步骤4所得菌液，于4℃4500×g离心10min，去上清；6用预冷超纯水在冰上反复清洗步骤5菌体沉淀；7向步骤6所得菌体中加入超纯水将菌液定容至500μl，每管100μl分装至预冷EP管，获得GS1783-pBAC-DPV-ΔgE电转感受态；8在100μl电转感受态中加入200ngI_SceI-Kana-gI打靶片段，混匀后将感受态和打靶片段一起加入2mm预冷的电击杯底部，15kVcm条件下进行电击；9取100μlLB液体培养基重悬电击后菌体，30℃摇菌1h后，于4500×g离心菌体2min，弃上清，200μlLB液体培养基悬浮沉淀，涂布于含有卡那霉素和氯霉素双抗生素抗性的LB固体培养基，于30℃培养48h；10PCR鉴定步骤9所得单菌落，获得阳性菌落GS178-pBAC-DPV-ΔgE-gI-Kana，以步骤9中生长的单菌落重悬液为模板，利用扩增I_SceI-Kana-gI打靶片段上游引物GS1783-BAC-ΔgI-F和鉴定gE基因下游引物gI-R鉴定阳性菌落；GS1783-BAC-ΔgI-F:5’-GTGCGCCATATAGACGATATATTGAGTTTCAAAAATAGAAtagggataacagggtaatcgattt-3SEQIDNO：5gI-R：5’-GACCGGTAGTTCCAATCACT-3’SEQIDNO：7PCR扩增体系为：ddH2O22μl、MaxDNAPolymerase25μl、上游引物GS1783-BAC-ΔgI-F1μl、下游引物gI-R1μl、模板1μl；PCR扩增条件为：98℃预变性2min、98℃变性10s、55℃退火15s、72℃延伸5s，共30个循环，最后72℃延伸10min，于16℃保存。7、去掉I_SceI-Kana片段1挑取GS1783-pBAC-DPV-ΔgE-gI-Kana单菌落接种于2mL含氯霉素的LB液体培养基中，30℃培养过夜，获得种子液；2取10μl步骤1所得种子液接种于2mL含氯霉素的LB液体培养基中，30℃培养2h至菌液呈现轻微云雾状；3向步骤2所得菌液中加入1mL含氯霉素的LB液体培养基和5M终浓度为2％的L-阿拉伯糖，30℃培养1h；4将步骤3所得菌液立即放入42℃水浴中培养30min；5将步骤4所得菌液置于30℃培养2h后，取1μl菌液加入200μlLB液体培养基中混匀后涂布到含有氯霉素的LB固体培养基，30℃培养24h～48h；6挑取步骤5中所得单菌落在含氯霉素和卡纳霉素双抗性LB固体培养基和氯霉素单抗性LB固体培养基上进行平行筛选，将氯霉素和卡纳霉素双抗性LB固体培养基不生长，氯霉素单抗性LB固体培养基生长的菌落通过PCR方法利用gI基因上游鉴定引物gI-F和gE基因下游鉴定引物gE-R进行鉴定，获得阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI。gI-F:5’-TGTGGGTGGGTCATCTACAT-3’SEQIDNO：14gE-R：5’-AGCGAGTACTTCTCTGCGTC-3’SEQIDNO：3PCR扩增体系为：ddH2O22μl、MaxDNAPolymerase25μl、上游引物gE-F1μl、下游引物gE-R1μl、模板为步骤6单菌落重悬液1μl；PCR扩增条件为：98℃预变性2min、98℃变性10s、55℃退火15s、72℃延伸5s，共30个循环，最后72℃延伸10min，于16℃保存。8、扩增I_SceI-Kana-MiniF片段1复苏带有pEPkan-S质粒的大肠杆菌于含有卡那霉素的LB固体培养基中，37℃培养过夜；挑单菌落接种于含有卡那霉素的LB液体培养基中，37℃培养过夜，质粒小提试剂盒提取pEPkan-S质粒；2以pEPkan-S质粒为模板，GS1783-MiniF-F和GS1783-MiniF-R为引物，扩增I_SceI-Kana-MiniF打靶片段，普通琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒回收扩增片段；GS1783-MiniF-F:5’-TTATTAATCTCAGGAGCCTGTGTAGCGTTTATAGGAAGTAGTGTTCTGTCATGATGCCTGCAAGCGGTAACGAAAACGATtgttacaaccaattaacc-3’SEQIDNO：8GS1783-MiniF-R:5’-ATCGTTTTCGTTACCGCTTGCAGGCATCATGACAGAACACTACTTCCTATtagggataacagggtaatcgat-3’SEQIDNO：9PCR扩增体系为ddH2O22μl、MaxDNAPolymerase25μl、上游引物GS1783-MiniF-F1μl、下游引物GS1783-MiniF-R1μl、模板pEPkan-S质粒1μl；PCR扩增条件为98℃预变性2min、98℃变性10s、55℃退火15s、72℃延伸5s，共30个循环，最后72℃延伸10min，于16℃保存。9、扩增UL23-MiniF片段1制备鸭胚成纤维细胞DEF并接种于25T细胞瓶，37℃，5％CO2培养24h后，接种5MOIDPVCHv，37℃，5％CO2培养48h后收获病毒，反复冻融2次后，按照TaKaRaMiniBESTViralRNADNAExtractionKitVer.5.0说明书提取DPVCHv基因组；2DPVCHv基因组为模板，CHv-UL23-F和CHv-UL23-R为引物，扩增UL23-MiniF打靶片段，普通琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒回收扩增片段；CHv-UL23-F:5’-GCCTGCAAGCGGTAACGAAAACGATtcaattaattgtcatctcgg-3’SEQIDNO：10CHv-UL23-R:5’-CCGCTCCACTTCAACGTAACACCGCACGAAGATTTCTATTGTTCCTGAAGGCATATTCAACGGACATATTAAAAATTGA-3’SEQIDNO：11PCR扩增体系为ddH2O22μl、MaxDNAPolymerase25μl、上游引物CHv-UL23-F1μl、下游引物CHv-UL23-R1μl、模板DPVCHv基因组1μl；PCR扩增条件为98℃预变性2min、98℃变性10s、55℃退火15s、72℃延伸5s，共30个循环，最后72℃延伸10min，于16℃保存。10、融合I_SceI-Kana-MiniF片段和UL23-MiniF片段获得I_SceI-Kana-MiniF-UL23打靶片段1以I_SceI-Kana-MiniF片段和UL23-MiniF片段为模板，融合I_SceI-Kana-MiniF片段和UL23-MiniF片段；融合体系为：ddH2O8μl、MaxDNAPolymerase10μl、模板I_SceI-Kana-MiniF片段和UL23-MiniF片段各1μl；融合条件为：95℃预变性5min、95℃变性15s、55℃退火5s、72℃延伸1min，共5个循环。2向步骤1所得的融合模板中加入引物GS1783-MiniF-F和CHv-UL23-R，扩增I_SceI-Kana-MiniF-UL23打靶片段，普通琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒回收扩增片段；GS1783-MiniF-F:5’-TTATTAATCTCAGGAGCCTGTGTAGCGTTTATAGGAAGTAGTGTTCTGTCATGATGCCTGCAAGCGGTAACGAAAACGATtgttacaaccaattaacc-3’SEQIDNO：8CHv-UL23-R:5’-CCGCTCCACTTCAACGTAACACCGCACGAAGATTTCTATTGTTCCTGAAGGCATATTCAACGGACATATTAAAAATTGA-3’SEQIDNO：11PCR扩增体系为：融合模板20μl、上游引物GS1783-MiniF-F0.5μl、下游引物CHv-UL23-R0.5μl；PCR扩增条件为：98℃预变性2min、98℃变性10s、55℃退火15s、72℃延伸5s，共30个循环，最后72℃延伸10min，于16℃保存。利用Red-Based修饰技术和细胞内自发同源重组技术对MiniF元件进行缺失的操作流程图见图3，具体过程包括如下的11、12和13。11、制备GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI电转感受态进行打靶片段打靶1复苏GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI冻存菌于含有氯霉素的LB固体培养基中，30℃培养过夜；2挑取GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI单菌落接种于5mL含氯霉素的LB液体培养基中，30℃培养过夜，获得种子液；3将5mL种子液加入100mL含氯霉素的LB液体培养基中，于30℃摇至OD600值在0.5～0.7之间；4将步骤3所得菌液于42℃培养15min后立即放入冰水混合物中冷却20min；5取50mL步骤4所得菌液，于4℃4500×g离心10min，去上清；6用预冷超纯水在冰上反复清洗步骤5所得菌体沉淀；7加入超纯水将步骤6所得菌液定容至500μl，每管100μl分装至预冷EP管，获得GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI电转感受态；8在100μl电转感受态中加入200ngI_SceI-Kana-MiniF-UL23打靶片段，混匀后将感受态和打靶片段一起加入2mm预冷的电击杯底部，15kVcm条件下进行电击；9加入100μlLB液体培养基重悬电击后菌体，30℃摇菌1h后，4500×g离心菌体2min，弃上清，200μlLB液体培养基悬浮沉淀，涂布含有卡那霉素和氯霉素双抗生素抗性的LB固体培养基，于30℃培养48h；10PCR鉴定步骤9所得单菌落，获得阳性菌落GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI-UL23-Kana，以步骤9中生长的单菌落重悬液为模板，利用鉴定引物MiniF-F和MiniF-R鉴定阳性菌落；MiniF-F:5’-GTTATCCACTGAGAAGCGAACG-3’SEQIDNO：12MiniF-R：5’-GGCTGTAAAAGGACAGACCACA-3’SEQIDNO：13PCR扩增体系为：ddH2O22μl、MaxDNAPolymerase25μl、上游引物MiniF-F1μl、下游引物MiniF-R1μl、模板为步骤9单菌落重悬液1μl；PCR扩增条件为：98℃预变性2min、98℃变性10s、55℃退火15s、72℃延伸15s，共30个循环，最后72℃延伸10min，于16℃保存。12、去掉I_SceI-Kana片段1挑取GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI-UL23-Kana单菌落接种于2mL含氯霉素的LB液体培养基中，30℃培养过夜，获得种子液；2取10μl步骤1所得种子液接种于2mL含氯霉素的LB液体培养基中，30℃培养2h至菌液呈现轻微云雾状；3向步骤2所得菌液中加入1mL含氯霉素的LB液体培养基和5M终浓度为2％的L-阿拉伯糖30℃，培养1h；4将步骤3所得菌液立即放入42℃水浴中培养30min；5将步骤4所得菌液置于30℃培养2h后，取1μl菌液加入200μlLB液体培养基中混匀后涂布到含有氯霉素的LB固体培养基，30℃培养24h～48h；6挑取步骤5中所得单菌落在含氯霉素和卡纳霉素双抗性LB固体培养基和氯霉素单抗性LB固体培养基上进行平行筛选，将氯霉素和卡纳霉素双抗性LB固体培养基不生长，氯霉素单抗性LB固体培养基生长的菌落通过PCR方法利用MiniF基因鉴定引物鉴定，获得阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI-UL23。MiniF-F:5’-GTTATCCACTGAGAAGCGAACG-3’SEQIDNO：12MiniF-R：5’-GGCTGTAAAAGGACAGACCACA-3’SEQIDNO：13PCR扩增体系为：ddH2O22μl、MaxDNAPolymerase25μl、上游引物MiniF-F1μl、下游引物MiniF-R1μl、模板为步骤6单菌落重悬液1μl；PCR扩增条件为：98℃预变性2min、98℃变性10s、55℃退火15s、72℃延伸5s，共30个循环，最后72℃延伸10min，于16℃保存。13、拯救DPVCHv-ΔgE+ΔgI病毒1复苏GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI-UL23冻存菌于含有氯霉素的LB固体培养基中，30℃培养过夜；2按照QIAGENPlasmidMidiKit操作说明提取pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI-UL23质粒；3制备鸭胚成纤维细胞DEF并接种于12孔板，37℃，5％CO2培养24h后，按照Lipofectamine3000操作说明转染pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI-UL23质粒，96h后观察荧光斑，收集病毒，反复冻融2次后接种于长满DEF的6孔板；4重复步骤3三次；5步骤4获得的病毒反复冻融2次后，10倍倍比稀释，接种于长满DEF的6孔板中，37℃，5％CO2孵育2h后，弃孵育液，加入1％甲基纤维素固定细胞，37℃，5％CO2培养120h后，挑取无荧光病变细胞，反复冻融2次后重新接种于DEF中，获得DPVCHv-ΔgE+ΔgI-Q；6按照TaKaRaMiniBESTViralRNADNAExtractionKitVer.5.0说明书提取DPVCHv-ΔgE+ΔgI-Q病毒基因组，利用MiniF鉴定引物MiniF-F和MiniF-R，鉴定缺失的MiniF元件，最终获得无MiniF元件残留，缺失基因处无碱基残留的无痕缺失病毒株DPVCHv-ΔgE+ΔgI阳性病毒株，见图4。MiniF-F:5’-GTTATCCACTGAGAAGCGAACG-3’SEQIDNO：12MiniF-R：5’-GGCTGTAAAAGGACAGACCACA-3’SEQIDNO：13PCR扩增体系为：ddH2O22μl、MaxDNAPolymerase25μl、上游引物MiniF-F1μl、下游引物MiniF-R1μl、模板为步骤6提取的DPVCHv-ΔgE+ΔgI-Q病毒基因组1μl；PCR扩增条件为：98℃预变性2min、98℃变性10s、55℃退火15s、72℃延伸5s，共30个循环，最后72℃延伸10min，于16℃保存。实施例2无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI接种7日龄鸭子后对病毒数量的检测将gE、gI基因和MiniF元件无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI以0.01MOI接种DEF细胞，接毒后120h收集细胞，反复冻融2次，测定TCID50后，取2MOIDPVCHv-ΔgE+ΔgI缺失病毒肌肉接种7日龄鸭子，分别于24h、48h、72h、96h采集鸭子的血液、肝脏和脾脏，按照TaKaRaMiniBESTViralRNADNAExtractionKitVer.5.0说明书提取各组织DNA。利用鉴定引物gE-F和gI-RPCR检测攻毒后48h鸭子肝脏病毒是否为gE基因和gI基因双缺失病毒见图5，利用UL30QPCR鉴定引物和Taq探针，QPCR检测不同时间点血液、肝脏和脾脏中病毒数量见图6。结果表明，DPVCHv-ΔgE+ΔgI接种鸭子后可在血液、肝脏和脾脏中检测到；血液、肝脏中DPVCHv-ΔgE+ΔgI病毒粒子数量均呈现先递增后消减的趋势；脾脏中DPVCHv-ΔgE+ΔgI病毒粒子数量呈现逐步消减的趋势；血液中DPVCHv-ΔgE+ΔgI病毒粒子数量低于肝脏和脾脏组织；肝脏组织DPVCHv-ΔgE+ΔgI病毒粒子数量于48h达到最高而脾脏组织于24h达到最高。此外，本发明还对鸭瘟病毒gE、gI基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI做了遗传稳定性实验、安全性实验和免疫原性实验。遗传稳定性：鸭瘟病毒gE、gI基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI在DEF细胞上传代20代，均出现病变空斑，表明所获得的鸭瘟病毒gE、gI基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI在DEF中稳定遗传。安全性：将15只4周龄DPV抗体阴性和PCR检测阴性鸭，随机分成3组，每组5只。第1组肌肉注射DPVCHv-ΔgE+ΔgI，第2组肌肉注射亲本病毒DPVCHv，两组中每只注射病毒的毒价相同，第3组注射等计量的MEM，作为对照组，每组单独隔离饲养，观察，每天记录发病死亡情况。由结果可知，注射有亲本病毒的鸭全部死亡，而注射有DPVCHv-ΔgE+ΔgI以及对照组中的鸭无死亡，说明DPVCHv-ΔgE+ΔgI安全性好。免疫原性：将10只4周龄DPV抗体阴性和PCR检测阴性鸭，随机分成2组，每组5只。第1组肌肉注射DPVCHv-ΔgE+ΔgI，第2组注射等剂量的MEM，作为对照组，每组单独隔离饲养。在免疫后14天，腿部肌肉注射接种DPVCHv强毒，观察并记录发病死亡情况。由结果可知，攻毒对照组100％死亡，免疫组100％保护，说明DPVCHv-ΔgE+ΔgI具有良好的免疫原性。序列表四川农业大学鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI及其构建方法14SIPOSequenceListing1.0164DNA人工序列ArtificialSequence1atactgccggccagactacggaacctcaacaattggtacgtagggataacagggtaatcg60attt64298DNA人工序列ArtificialSequence2taactatttcactagtgagtcattagttcaacatccatgacgtaccaattgttgaggttc60cgtagtctggccggcagtatgccagtgttacaaccaat98320DNA人工序列ArtificialSequence3agcgagtacttctctgcgtc20420DNA人工序列ArtificialSequence4tctcaagacgctctggaatc20564DNA人工序列ArtificialSequence5gtgcgccatatagacgatatattgagtttcaaaaatagaatagggataacagggtaatcg60attt64698DNA人工序列ArtificialSequence6tcataacaaaaacatttacttttagtcatactgatgtgaattctatttttgaaactcaat60atatcgtctatatggcgcacgccagtgttacaaccaat98720DNA人工序列ArtificialSequence7gaccggtagttccaatcact20898DNA人工序列ArtificialSequence8ttattaatctcaggagcctgtgtagcgtttataggaagtagtgttctgtcatgatgcctg60caagcggtaacgaaaacgattgttacaaccaattaacc98972DNA人工序列ArtificialSequence9atcgttttcgttaccgcttgcaggcatcatgacagaacactacttcctattagggataac60agggtaatcgat721045DNA人工序列ArtificialSequence10gcctgcaagcggtaacgaaaacgattcaattaattgtcatctcgg451179DNA人工序列ArtificialSequence11ccgctccacttcaacgtaacaccgcacgaagatttctattgttcctgaaggcatattcaa60cggacatattaaaaattga791222DNA人工序列ArtificialSequence12gttatccactgagaagcgaacg221322DNA人工序列ArtificialSequence13ggctgtaaaaggacagaccaca221420DNA人工序列ArtificialSequence14tgtgggtgggtcatctacat20

权利要求：1.鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI，于2018年7月4日保藏于中国典型培养物保藏中心，保藏编号为CCTCCNO：V201841。2.如权利要求1所述的鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI的构建方法，其特征在于，包括以下步骤：1将pBAC-DPV质粒转化到GS1783大肠杆菌感受态中，获得GS1783-pBAC-DPV菌株，然后制备GS1783-pBAC-DPV感受态；2以pEPkan-S为模板，以GS1783-BAC-ΔgE-F和GS1783-BAC-ΔgE-R作为引物，通过PCR方法扩增包含I_SceI酶切位点和Kana元件的碱基片段以及gE基因上游和下游各40bp同源臂的打靶片段I_SceI-Kana-gE，切胶回收获得I_SceI-Kana-gE片段；3将I_SceI-Kana-gE片段转化到GS1783-pBAC-DPV感受态中，筛选，获得阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-gE-Kana；4将阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-gE-Kana中的I_SceI-Kana片段去掉，制备GS1783-pBAC-DPV-ΔgE感受态；5以pEPkan-S为模板，以GS1783-BAC-ΔgI-F和GS1783-BAC-ΔgI-R作为引物，通过PCR方法扩增包含I_SceI酶切位点和Kana元件的碱基片段以及gI基因上游和下游各40bp同源臂的打靶片段I_SceI-Kana-gI，切胶回收获得I_SceI-Kana-gI片段；6将I_SceI-Kana-gI片段转化到GS1783-pBAC-DPV-ΔgE感受态中，经抗生素筛选和PCR鉴定，获得阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-ΔgE-gI-Kana；7将阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-ΔgE-gI-Kana中的I_SceI-Kana片段去掉，制备GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI感受态；8以pEPkan-S为模板，以GS1783-MiniF-F和GS1783-MiniF-R作为引物，通过PCR方法扩增包含I_SceI酶切位点和Kana元件的碱基片段、位于MiniF元件ori2基因下游240bp处和位于MiniF元件ori2基因下游290bp处的同源臂片段I_SceI-Kana-MiniF，切胶回收获得I_SceI-Kana-MiniF片段；9以CHv基因组为模板，以CHv-UL23-F和CHv-UL23-R作为引物，通过PCR方法扩增包含UL23基因、I_SceI-Kana-MiniF下游同源臂重叠25bp和位于MiniF元件ori2基因下游180bp处的同源臂片段，切胶回收获得UL23-MiniF片段；10以I_SceI-Kana-MiniF片段和UL23-MiniF片段为模板，进行PCR融合反应，然后以融合片段为模板，以GS1783-MiniF-F和CHv-UL23-R作为引物进行PCR扩增获得I_SceI-Kana-MiniF-UL23打靶片段；11将I_SceI-Kana-MiniF-UL23打靶片段转化到GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI感受态中，经抗生素筛选和PCR鉴定，获得阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI-UL23-Kana；12将阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI-UL23-Kana中的I_SceI-Kana片段去掉，获得阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI-UL23；13从阳性克隆子GS1783-pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI-UL23中提取pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI-UL23质粒，将pBAC-DPV-ΔgE+ΔgI-UL23质粒转染DEF细胞，通过克隆筛选，获得gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI。3.根据权利要求2所述的鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI的构建方法，其特征在于，步骤2、步骤5、步骤8和步骤9中PCR扩增体系为：ddH2O22μl、MaxDNAPolymerase25μl、上游引物1μl、下游引物1μl、模板1μl；PCR扩增条件为：98℃预变性2min、98℃变性10s、55℃退火15s、72℃延伸5s，共30个循环，最后72℃延伸10min。4.根据权利要求2或3所述的鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI的构建方法，其特征在于，步骤2中引物序列为：GS1783-BAC-ΔgE-F:5’-ATACTGCCGGCCAGACTACGGAACCTCAACAATTGGTACGtagggataacagggtaatcgattt-3’；GS1783-BAC-ΔgE-R:5’-TAACTATTTCACTAGTGAGTCATTAGTTCAACATCCATGACGTACCAATTGTTGAGGTTCCGTAGTCTGGCCGGCAGTATgccagtgttacaaccaat-3’。5.根据权利要求2或3所述的鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI的构建方法，其特征在于，步骤5中引物序列为：GS1783-BAC-ΔgI-F:5’-GTGCGCCATATAGACGATATATTGAGTTTCAAAAATAGAAtagggataacagggtaatcgattt-3’；GS1783-BAC-ΔgI-R:5’-TCATAACAAAAACATTTACTTTTAGTCATACTGATGTGAATTCTATTTTTGAAACTCAATATATCGTCTATATGGCGCACgccagtgttacaaccaat-3’。6.根据权利要求2或3所述的鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI的构建方法，其特征在于，步骤8中引物序列为：GS1783-MiniF-F:5’-TTATTAATCTCAGGAGCCTGTGTAGCGTTTATAGGAAGTAGTGTTCTGTCATGATGCCTGCAAGCGGTAACGAAAACGATtgttacaaccaattaacc-3’；GS1783-MiniF-R:5’-ATCGTTTTCGTTACCGCTTGCAGGCATCATGACAGAACACTACTTCCTATtagggataacagggtaatcgat-3’。7.根据权利要求2或3所述的鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI的构建方法，其特征在于，步骤9中引物序列为：CHv-UL23-F:5’-GCCTGCAAGCGGTAACGAAAACGATtcaattaattgtcatctcgg-3’；CHv-UL23-R:5’-CCGCTCCACTTCAACGTAACACCGCACGAAGATTTCTATTGTTCCTGAAGGCATATTCAACGGACATATTAAAAATTGA-3’。8.根据权利要求2所述的鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI的构建方法，其特征在于，步骤10中引物序列为：GS1783-MiniF-F:5’-TTATTAATCTCAGGAGCCTGTGTAGCGTTTATAGGAAGTAGTGTTCTGTCATGATGCCTGCAAGCGGTAACGAAAACGATtgttacaaccaattaacc-3’；CHv-UL23-R:5’-CCGCTCCACTTCAACGTAACACCGCACGAAGATTTCTATTGTTCCTGAAGGCATATTCAACGGACATATTAAAAATTGA-3’。9.根据权利要求2或8所述的鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI的构建方法，其特征在于，步骤10中PCR融合体系为：ddH2O8μl、MaxDNAPolymerase10μl、模板I_SceI-Kana-MiniF片段和UL23-MiniF片段各1μl；PCR融合条件为：95℃预变性5min、95℃变性15s、55℃退火5s、72℃延伸1min，共5个循环。10.根据权利要求2或8所述的鸭瘟病毒gE和gI双基因无痕缺失株DPVCHv-ΔgE+ΔgI的构建方法，其特征在于，步骤10中PCR扩增体系为：融合模板20μl、上游引物GS1783-MiniF-F0.5μl、下游引物CHv-UL23-R0.5μl；PCR扩增条件为：98℃预变性2min、98℃变性10s、55℃退火15s、72℃延伸5s，共30个循环，最后72℃延伸10min。

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